[ Ana Sayfa | Editörler | Danışma Kurulu | Dergi Hakkında | İçindekiler | Arşiv | Yayın Arama | Yazarlara Bilgi | E-Posta ]
Fırat Üniversitesi Sağlık Bilimleri Veteriner Dergisi
2025, Cilt 39, Sayı 3, Sayfa(lar) 164-168
[ Özet ] [ PDF ] [ Benzer Makaleler ] [ Yazara E-Posta ] [ Editöre E-Posta ]
Trombositten Zengin Plazma (PRP) İçeren Sperma ile Tohumlanan Koyunlarda Bazı Reprodüktif Parametreler
İbrahim Halil GÜNGÖR1, Nida BADILLI1, Tutku Can ACISU1, Aslıhan ÇAKIR CİHANGİROĞLU2, Serap DAYAN CİNKARA1, Şuheda YÜKSEL1, Şeyma ÖZER1, Seyfettin GÜR1, Mustafa SÖNMEZ1, Gaffari TÜRK1
1Fırat Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Dölerme ve Suni Tohumlama Ana Bilim Dalı, Elazığ, TÜRKİYE
2Siirt Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Dölerme ve Suni Tohumlama Ana Bilim Dalı, Siirt, TÜRKİYE
Anahtar Kelimeler: Koyun, gebelik oranı, in vitro/in vivo PRP, intraservikal suni tohumlama, koç sperması
Özet
Bu çalışmada, intraepididimal yolla otolog PRP uygulanmış koçlardan elde edilen dondurulmuş spermalar ile, sperma sulandırıcılarında homolog PRP içeren dondurulmuş spermalarla intraservikal suni tohumlama yöntemi kullanılarak tohumlanan koyunlardan elde edilen gebelik oranlarının değerlendirilmesi amaçlanmıştır. Bu amaçla, intravajinal süngerler kullanılarak 75 Akkaraman koyunu senkronize edildi ve her biri 25 hayvandan oluşan üç gruba ayrıldı. Grup 1: PRP içermeyen dondurulmuş spermalarla (Kontrol grubu), Grup 2: koçlara intraepididimal PRP uygulanarak elde edilen dondurulmuş spermalarla (İn vivo PRP grubu), Grup 3: sulandırıcısında %5 oranında PRP içeren dondurulmuş spermalarla (İn vitro PRP grubu) tohumlandı. Her bir gruptaki hayvanlara ait gebelik süresi, kuzulama oranı, çoklu doğum oranı, dişi ve erkek kuzu oranları ile kuzu doğum ağırlığı gibi reprodüktif parametreler kayıt altına alındı. İn vitro PRP grubundaki gebelik oranı kontrol ve in vivo PRP grubuna göre daha yüksek bulunsa da istatistiki açıdan önemli değildi. Gebelik süreleri yönünden tüm gruplar arasında gözlenen farklılıklar anlamsızdı. Kontrol ve in vivo PRP grubundaki tüm koyunlar tekli doğum yaparken, invitro PRP grubundaki bir koyun ikiz doğum yaptı. Gruplar arasında çoklu doğum oranları arasında anlamlı bir farklılık tespit edilemedi. Dişi ve erkek kuzu oranları ile kuzu doğum ağırlıkları yönünden gruplar arasında gözlenen farklılıklar istatistiki olarak anlamlı değildi. Sonuç olarak; in vivo PRP’nin reprodüktif parametreler üzerine herhangi bir etkisi olmasa da, reprodüktif parametrelerde gözlenen hafif bir artışa istinaden %5 in vitro PRP içeren dondurulmuş-çözdürülmüş sperma ile intraservikal tohumlama tavsiye edilmektedir.
  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Giriş
    Küçükbaş hayvan yetiştiriciliğinde genetik seleksiyonun hızlandırılması ve sürü verimliliğinin artırılması amacıyla suni tohumlama, yaygın olarak kullanılan bir reprodüktif biyoteknoloji yöntemidir. Özellikle spermanın dondurularak saklanabilmesi, genetik materyalin uzun yıllar boyunca kullanılmasına olanak tanımaktadır. Ancak, kriyoprezervasyon işlemi sırasında spermatozoonlar ciddi düzeyde fizyolojik ve biyokimyasal strese maruz kalmakta, bu durum sperm motilitesi, membran bütünlüğü, mitokondriyal fonksiyonlar ve DNA bütünlüğü gibi temel fertilite parametrelerinde bozulmalara yol açmaktadır1,2.

    Koç spermatozoonlarının dondurma-çözme sürecine karşı duyarlılığı, suni tohumlama sonrası gebelik oranlarının istenilen düzeye ulaşamamasının temel nedenlerinden biridir. Bu nedenle, son yıllarda kriyoprezervasyonun zararlı etkilerine karşı koruyabilecek yeni biyolojik katkı maddelerinin kullanımı gündeme gelmiştir. Bukatkılar arasında, zengin biyolojik içeriği sayesinde dikkat çeken trombositten zengin plazma (platelet-rich plasma, PRP), hücre rejenerasyonunu destekleme potansiyeliyle öne çıkmaktadır3,4. PRP; yüksek konsantrasyonda trombosit içeren, otolog veya homolog olarak hazırlanabilen biyolojik bir üründür. İçeriğinde yer alan büyüme faktörleri (PDGF, TGF-β, VEGF, IGF, vb.), sitokinler ve antioksidan bileşenler sayesinde anti-inflamatuar ve hücre koruyucu etkilere sahiptir3. Veteriner hekimlikte doku iyileşmesini destekleyici özelliğiyle başta ortopedi ve yumuşak doku onarımı olmak üzere çeşitli alanlarda kullanılan PRP, son yıllarda erkek fertilitesinin korunması ve iyileştirilmesine yönelik araştırmalarda da değerlendirilmeye başlanmıştır. Özellikle sperm kalitesini artırma, oksidatif hasarı azaltma ve hücresel canlılığı koruma yönünde umut verici sonuçlar elde edilmiştir5.

    Bu çalışmada, intraepididimal yolla otolog PRP uygulanmış koçlardan elde edilen dondurulmuş spermalar ile, homolog PRP içeren dondurulmuş spermaların fertilite kapasiteleri karşılaştırmalı olarak değerlendirilmiştir. Dondurulmuş-çözdürülmüş spermalar, intraservikal suni tohumlama yöntemi kullanılarak koyunlara uygulanmış ve gebelik oranları temel fertilite kriteri olarak analiz edilmiştir. Bu bağlamda, hem in vitro hem de in vivo düzeyde PRP uygulamalarının kriyoprezervasyon sırasında spermatozoonlar üzerinde oluşturabileceği faydalı etkilerinden yararlanarak, koyunlarda suni tohumlama başarısı üzerindeki etkilerinin araştırılması, literatürdeki önemli bir boşluğu dolduracak ve reprodüktif biyoteknolojilere biyolojik katkı maddesi entegrasyonu konusunda yeni perspektifler sunacaktır.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Materyal ve Metot
    Araştırma ve Yayın Etiği: Bu çalışma için Fırat Üniversitesi Hayvan Deneyleri Yerel Etik Kurulundan 2020/05 protokol numarasıyla etik onay alınmıştır.

    Hayvan Materyali: PRP’nin spermanın in vivo ve in vitro fertilitesi üzerine etkisini tespit etmek için en az bir doğum yapmış genel ve genital hastalığı bulunmayan 75 baş Akkaraman koyun kullanıldı. Bu aşamadaki senkronizasyon ve tohumlama işlemleri üreme mevsimi dışındaki Temmuz ayında gerçekleştirildi.

    Senkronizasyon Protokolü, Koyunların Gruplandırılması ve Tohumlanması: Senkronizasyon amacıyla tüm koyunların vajinasına vulva dezenfeksiyonu yapıldıktan sonra progestagen emdirilmiş intravajinal süngerler (Chronogest® CR, 20 mg flurogestan asetat/sünger, Igoville, France) yerleştirildi ve 12 gün boyunca burada kalması sağlandı. Süngerin çıkarıldığı gün hayvanlara 600 IU eCG (Chrono-Gest/PMSG, 6000 IU/25 mL, MSD Animal Health, Unterschleissheim, Almanya) enjeksiyonu yapıldı ve koyunlar her birinde 25 baş olacak şekilde 3 gruba ayrıldı. Birinci gruptaki hayvanları (kontrol) herhangi bir uygulama yapılmayan koçlara ait dondurulmuş spermalar ile tohumlanan koyunlar oluşturdu. İkinci gruptaki hayvanları (İn vivo PRP grubu) intraepididimal PRP enjeksiyonundan (12 Akkaraman ırkı koça 15 günde 1 defa PRP enjeksiyonu, toplamda 6 enjeksiyon, her enjeksiyonda 0.2 mL, 150-200 milyon trombosit içeriği ile enjekte edildi. Spermalar her enjeksiyondan 15 gün sonra toplandı) sonra dondurulan spermalar ile tohumlanan koyunlar, üçünü gruptaki hayvanları (İn vitro PRP grubu) ise in vitro en iyi sonuca sahip PRP konsantrasyonunu (%5) içeren dondurulmuş spermalar ile tohumlanan koyunlar oluşturdu. Kullanılan bu spermalara ait ortalama spermatolojik veriler; kontrol grubu için; total motilite: %38.53, total anormalite: %2.08, canlılık düzeyi: %44.29, İn vivo PRP grubu için; total motilite: %51.40, total anormalite: %7.50, canlılık düzeyi: %53.36, İn vitro PRP grubu için; total motilite: %49.88, total anormalite: %1.75, canlılık düzeyi: %51.75’tir. Tohumlama yöntemi olarak intraservikal metot kullanıldı. Süngerlerin çıkarılmasından sonraki 48. ve 60. saatlerde iki kez yapılan sabit zamanlı tohumlama için, perineal bölgenin dezenfeksiyonundan sonra vulva spekülüm ile açılarak serviksin vajinaya bakan kısmı baş lambası ile aydınlatıldı ve kateterle serviksin orifisyum uteri eksternasına 1 cm kadar girilerek sperma serviksin içerisine bırakıldı.

    Gebelik ve Bazı Reprodüktif Parametrelerin Kontrolü: Gebeliklerin kontrolü tohumlama sonrası 45-50. günler arasında real-time ultrasonografi ve 7.5 MHz lineer prob (Sonosite M-Turbo renkli doppler ultrason, Fujifilm, Bothell, Washington, ABD) yardımıyla transrektal olarak yapıldı. Her bir gruptaki hayvanlara ait gebelik süreleri, kuzulama oranları, çoklu kuzulama oranları, dişi ve erkek kuzu oranları ile kuzu doğum ağırlıkları gibi reprodüktif veriler kayıt altına alındı.

    İstatistiki Analiz: Tüm veriler SPSS 22.0 programında analiz edildi. Sürekli değişkenler (gebelik süresi, kuzu doğum ağırlığı) öncelikle Shapiro-Wilk testi ile normal dağılım açısından değerlendirildi. Normal dağılım gösteren değişkenler için gruplar arası farklar tek yönlü varyans analizi (One-way ANOVA) ve post-hoc Tukey HSD testi ile karşılaştırıldı. Kategorik değişkenler (gebelik oranı, kuzulama oranı, çoklu kuzulama, dişi kuzu ve erkek kuzu oranları) için ise, düşük hücre frekansına sahip değişkenlerde (çoklu kuzulama, dişi ve erkek kuzu oranları) Fisher’s Exact Test uygulandı. Hücre frekansları yeterli olan değişkenlerde (gebelik oranı) Pearson Ki-kare testi uygulandı. Kuzulama oranı tüm gruplarda %100 olduğu için istatistiksel analiz uygulanmadı. Tüm testler iki yönlü olarak değerlendirildi ve p<0.05 istatistiksel olarak anlamlı kabul edildi.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Bulgular
    Reprodüktif Parametrelere İlişkin Veriler: Kontrol, ikinci aşamada intraepididimal PRP uygulanmış hayvanların dondurulmuş-çözdürülmüş spermaları (İn vivo PRP grubu) ve üçüncü aşamada %5 PRP katılan dondurulmuş-çözdürülmüş spermalar (İn vitro PRP grubu) kullanılarak intraservikal tohumlanan koyunlardan elde edilen reprodüktif parametrelere ilişkin veriler Tablo 1’de sunulmuştur.


    Büyütmek İçin Tıklayın
    Tablo 1: Kontrol ve farklı PRP uygulamalarıyla hazırlanan dondurulmuş-çözdürülmüş spermalarla tohumlanan koyunlardaki bazı reprodüktif parametrelere ilişkin veriler

    Gebelik Oranı ve Süresi: İn vitro PRP grubundaki gebelik oranı kontrol ve İn vivo PRP grubuna göre daha yüksek bulunsa da istatistiki açıdan önemli değildi. Benzer şekilde gebelik süreleri yönünden tüm gruplar arasında gözlenen farklılıklar anlamsızdı (Tablo 1).

    Kuzulama Oranı: Tüm gruplarda gebe kalan koyunların hepsi doğum yaptıklarından dolayı kuzulama oranı %100 olarak tespit edildi. Kontrol ve İn vivo PRP grubundaki tüm koyunlar tekli doğum yaparken, İn vitro PRP grubundaki bir koyun ikiz doğum yaptı. Gruplar arasında çoklu doğum oranları arasında anlamlı bir farklılık tespit edilemedi (Tablo 1).

    Cinsiyet Oranı ve Kuzu Doğum Ağırlığı: Dişi ve erkek kuzu oranları ile kuzu doğum ağırlıkları yönünden gruplar arasında gözlenen farklılıklar istatistiki olarak anlamlı değildi (Tablo 1).

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Tartışma
    Suni tohumlama, çiftlik hayvanlarının genetik kapasitesini iyileştirmek için uygulanan ilk ve önemli biyoteknolojik yöntemdir. Yüksek üretkenlik potansiyeline sahip erkeklerin arzu edilen özelliklerinin hızlı bir şekilde yayılmasını sağlar6. Koyunlarda taze ve soğutulmuş sperma ile intraservikal suni tohumlama kabul edilebilir gebe kalma oranları sağlarken, her iki spermanın da kısa raf ömrü ve birim zamanda elde edilebilecek sperma dozu sayısındaki doğal sınırlama, erkek damızlıkların yaygın kullanımını kısıtlamaktadır7. Bu nedenle, suni tohumlama yoluyla genetik faydaları en üst düzeye çıkarmak için dondurulmuş-çözdürülmüş sperma kullanımı bir ön koşuldur. Bununla birlikte dondurulmuş-çözdürülmüş sperma ile iyi bir fertilizasyon oranı, invaziv ve saha şartlarında kullanımı zor olan laparoskopik yöntem kullanılmasını gerektirir. Bunun yerine saha şartlarında kullanımı daha kolay olan intraservikal yöntemle dondurulmuş-çözdürülmüş spermalardan elde edilen fertilizasyon oranları taze ve soğutulmuş spermaya göre düşük kalmaktadır8. Dondurulmuş-çözdürülmüş sperma ile intraservikal tohumlamadan elde edilen düşük gebelik oranları, dondurma-çözdürme işlemi sırasında spermatozoanın hasar görmesine ve bunun sonucunda sperm transportunun, canlılığının ve dölleme kapasitesinin bozulmasına ve embriyonik mortalitenin artmasına bağlanmaktadır8,9. Dondurulmuş-çözdürülmüş sperma ile intraservikal tohumlanan koyunlardaki gebelik oranlarının üreme sezonu dışında %18 düzeylerinde kaldığı10, üreme sezonunda ise %42-58 arasında değiştiği11-13 bildirilmiştir. Bu çalışmada üreme sezonu dışında tohumlanan kontrol grubu hayvanlardan elde edilen %20 oranındaki gebelik oranı, Yamaki ve ark.10’nin bulgularına benzer bulunmuştur. Mevcut çalışmada dondurulmuş-çözdürülmüş sperma kullanımına bağlı şekillenen düşük gebelik oranlarının iyileştirilmesi bağlamında dondurma-çözdürme hasarlarının azaltılması amacıyla intraepididimal PRP uygulanmış koçlardan alınan ve ayrıca in vitro PRP ilave edilmiş dondurulmuş-çözdürülmüş spermalarla suni tohumlama yapılmıştır. İntraepididimal PRP uygulanan hayvanlardan alınan spermaların dondurulup çözdürülmesinden sonra kontrolüne göre düşük oksidatif stres düzeyi ile yüksek kolesterol, CatSper ve Trp iyon kanal ekspresyonu, HSD3β, StAR ve PDGF düzeyleri, plazma ve akrozom membran bütünlüğü, total ve progressif motilite, VCL, VSL ve VAP değerlerine sahip olduğu bu çalışmada kanıtlanmıştır. Öte yandan %5 PRP’li dondurulmuş-çözdürülmüş spermanın da intraepididimal uygulamada olduğu gibi morfo-fonksiyonel ve moleküler özellikler bakımından kontrolüne göre daha iyi sonuçlara sahip olduğu mevcut çalışmada açık bir şekilde ortaya koyulmuştur.

    Bu çalışmada üreme mevsimi dışında progestagen emdirilmiş vajinal süngerlerle senkronize edilen koyunların intraservikal yöntem ve intraepididimal PRP’li (in vivo PRP grubu) ve %5 PRP ilaveli (in vitro PRP grubu) dondurulmuş-çözdürülmüş spermalar kullanılarak tohumlanmalarından elde edilen gebelik oranları ve diğer reprodüktif parametrelerin (gebelik süresi, kuzulama oranı, çoklu kuzulama oranı, dişi kuzu oranı, erkek kuzu oranı ve kuzu doğum ağırlığı) Kontrol grubuna göre farklı olmadığı gözlendi. Her ne kadar in vitro PRP grubundan elde edilen gebelik oranı (%28) ve çoklu doğum oranı (%14.29) kontrol ve in vivo PRP grubundan daha yüksek olmasına rağmen istatistiki olarak anlamsızdı. Koyunlarda östrus senkronizasyonu sonrası sabit zamanlı tohumlamada başarı, yalnızca sperm kalitesiyle değil, aynı zamanda endometriumun reseptivitesi ve embriyo-maternal etkileşimlerle de ilişkilidir14. Bu nedenle PRP’nin sperma kalitesine sağladığı katkı, üreme sezonu dışında uterusun biyolojik ortamı tarafından kısmen sınırlandırılmış olabilir. Bu çalışmadaki gibi intraepididimal ve in vitro PRP uygulanmış dondurulmuş-çözdürülmüş sperma kullanımı ile intraservikal tohumlamaların yapıldığı koyunlara ait çalışmaya rastlanmamıştır. Ancak koyunlarda yapılan suni tohumlama çalışmalarında dondurulmuş spermalarla yapılan tohumlamaların taze spermaya göre gebelik açısından oldukça düşük kaldığı görülmektedir15. Bu durumun temel nedenlerinden biri akrozomal bütünlüğün bozulmasıyla birlikte zona pellucida’ya bağlanma ve penetrasyon kapasitesinin azalmasıdır. Dolayısıyla laboratuvar ortamında elde edilen sonuçların, doğrudan döl verimi parametreleriyle ilişkili olduğu anlaşılmaktadır. Bununla birlikte üreme sezonunda vajinal süngerle senkronize edilen keçilerde yapılan bir çalışmada, %5 ve %10 konsantrasyonlarında in vitro PRP içeren dondurulmuş-çözdürülmüş spermalar ile intraservikal tohumlamalardan %60-80 arasında gebelik ve doğum oranı elde edildiği, bu oranların kontrol grubunda elde edilen gebelik ve doğum oranlarına göre istatistiki olarak yüksek olduğu bildirilmiştir16. Tüm bunlara ek olarak dondurulmuş spermalar ile yapılan tohumlamalarda spermatozoonların uterus ortamında geçirdiği değişikliklerde dikkate alınmalıdır. Gebelik oranlarını etkileyen yalnızca sperm hücresinin yapısal bütünlüğü değil, aynı zamanda uterin immün yanıt, seminal plazma proteinlerinin rolü ve sperm-epitelyal hücre etkileşimleridir. Özellikle koyunlarda spermatozoonların uterin lümende geçirdiği transit süresince, plazma membranı stabilitesini koruyabilmesi fertilizasyon başarısı açısından kritik görülmektedir17. Boğa spermlerinin fertilizasyon kapasitesinin artırılmasına yönelik bir çalışmada %5 PRP’li dondurulmuş-çözdürülmüş sperma kullanımı ile gerçekleştirilen in vitro fertilizasyonda, döllenmiş oosit (PRP; %79.8, kontrol; %68.2), bölünmüş (PRP; %65.1, kontrol; %48.8) ve blastosist evresi (PRP; %53.7, kontrol; %36.6) embriyo oranlarının kontrole göre önemli ölçüde daha yüksek, polisperminin (PRP; %2.1, kontrol; %7.9) ise anlamlı derecede düşük olduğu saptanmıştır18. Bilindiği üzere, iyi bir sperm motilitesi, plazma ve akrozom membran bütünlüğü, DNA bütünlüğü, mitokondriyal membran potansiyeli gibi sperma özellikleri başarılı bir fertilizasyon için spermada aranacak özelliklerdendir. PRP’li sperma kullanımından elde edilen daha iyi embriyo gelişimi18,19 ve gebelik oranlarının16, kriyoprezervasyonun spermatozoada meydana getirdiği hasarların PRP tarafından azaltılması ya da önlenmesi sayesinde olduğu iddia edilmiştir. PRP’nin kriyoprezervasyon hasarlarını önleme mekanizmasının altında yatan neden, PRP’nin büyüme faktörleri, antioksidan enzimler, iz elementler20,21 ve biyoaktif lipitler22 yönünden zengin olması olabilir. Çünkü büyüme faktörleri (23-27), antioksidan enzimler28-31, iz elementler32, kolesterol33,34 ve yağ asitlerinin35 kriyoprezervasyona karşı spermatozoayı koruduğu iyi bilinmektedir. Öte yandan in vitro embriyo transferi ile fertilizasyon başarısızlığı yaşayan kadınlarda intrauterin PRP uygulamasının gebe kalma üzerine önemli etkilerinin olduğu ileri sürülmüştür36,37. Bu çalışmada İn vitro PRP grubundan elde edilen sonuçlar kontrole göre sayısal olarak yüksek bulunsa da Salama ve ark.16’nin keçilerde, El-Sherbiny ve ark.18’nin sığırlarda elde ettikleri istatistiki olarak önemli bulgularla uyuşmamaktadır. Bu durumun temel nedeni, kullanılan hayvan materyallerinin farklı olması, bu çalışmada tohumlamaların üreme sezonu dışında ve östrus kontrolsüz sabit zamanlı olarak yapılmasıyla ilişkili olabilir. Dolayısıyla intraepididimal PRP içeren dondurulmuş-çözdürülmüş spermalarla üreme sezonu dışında intraservikal tohumlamanın koyunlarda gebelik ve çoklu doğum, kuzulama, cinsiyet oranı gibi diğer reprodüktif parametreler üzerine herhangi bir etkisi olmasa da, İn vitro PRP grubundaki gebelik oranları ve çoklu doğum oranlarında gözlenen hafif bir artışa istinaden %5 in vitro PRP içeren dondurulmuş-çözdürülmüş sperma ile intraservikal tohumlama tavsiye edilmektedir.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Kaynaklar

    1) Watson PF. The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Anim Reprod Sci 2000; 60-61: 481-492.

    2) Aitken RJ, Clarkson JS. Cellular basis of defective sperm function and its association with the genesis of reactive oxygen species by human spermatozoa. J Reprod Fertil 1987; 81(2): 459-469.

    3) Foster TE, Puskas BL, Mandelbaum BR, Gerhardt MB, Rodeo SA. Platelet-rich plasma: From basic science to clinical applications. Am J Sports Med 2009; 37(11): 2259-2272.

    4) Marx RE. Platelet-rich plasma (PRP): What is PRP and what is not PRP? Implant Dent 2001; 10(4): 225-228.

    5) Türk G, Güngör İH, Arkalı G, et al. In vitro effect of platelet-rich plasma (PRP) on morpho-functional characteristics, oxidative stress, apoptosis and CatSper-1 ion channel in short-term stored (5°C) ram semen. Small Rumin Res 2025; 244: 107449.

    6) Gibbons AE, Fernandez J, Bruno-Galarraga MM, Spinelli MV, Cueto MI. Technical recommendations for artificial insemination in sheep. Anim Reprod 2019; 16(4): 803-809.

    7) Gordon I. Controlled Reproduction in Sheep and Goats. Volum 2, London, UK: CAB International, 1997.

    8) Salamon S, Maxwell WMC. Frozen storage of ram semen I. Processing, freezing, thawing and fertility after cervical insemination. Anim Reprod Sci 1995; 37: 185-249.

    9) Lightfoot RJ, Salamon S. Fertility of ram spermatozoa frozen by the pellet method. I. Transport and viability of spermatozoa within the genital tract of the ewe. J Reprod Fertil 1970; 22(3): 385-398.

    10) Yamaki K, Morisawa M, Ribadulla A, Kojima J. Sheep semen characteristics and artificial insemination by laparoscopy. Tohoku J Agric Res 2003; 54(1-2): 17-26.

    11) Olesen I. Effects of cervical insemination with frozen semen on fertility and litter size of Norwegian sheep. Livest Prod Sci 1993; 37(1-2): 169-184.

    12) Donovan A, Hanrahan JP, Kummen E, Duffy P, Boland MP. Fertility in the ewe following cervical insemination with fresh or frozen-thawed semen at a natural or synchronised oestrus. Anim Reprod Sci 2004; 84(3-4), 359-368.

    13) King ME, Mc Kelvey WAC, Dingwall WS, et al. Lambing rates and litter sizes following intrauterine or cervical insemination of frozen-thawed semen with or without oxytocin administration. Theriogenology 2004; 62: 1236-1244.

    14) Spencer TE, Bazer FW. Uterine and placental factors regulating conceptus growth in domestic animals. J. Anim. Sci 2004;82(suppl_13): E4-E13.

    15) Anel L, Alvarez M, Martinez‐Pastor F, et al. Improvement strategies in ovine artificial insemination. Reprod Domest Anim, 2006;41: 30-42.

    16) Salama MS, Sheabeldin AM, Ashour MA, et al. Effect of the addition of platelet-rich plasma to Boer buck semen on sperm quality and antioxidant activity before and after cryopreservation and in vivo fertility. Small Rumin Res 2024; 230: 107167.

    17) Rodriguez-Martinez H. Role of the oviduct in sperm capacitation. Theriogenology, 2007;68: S138-S146.

    18) El-Sherbiny HR, Abdelnaby EA, Samir H, Fathi M. Addition of autologous platelet rich plasma to semen extender enhances cryotolerance and fertilizing capacity of buffalo bull spermatozoa. Theriogenology 2022; 194: 104-109.

    19) Ulhe SM, Choudhary N, Shrivastava J, et al. Overcoming male factor infertility: A journey through assisted reproductive technology with platelet-rich plasma therapy. Cureus 2024; 16(3): e55378.

    20) Marx RE. Platelet-rich plasma: Evidence to support its use. J Oral Maxillofac Surg 2004; 62(4): 489-496.

    21) Irmak G, Demirtaş TT, Gümüşderelioğlu M. Sustained release of growth factors from photoactivated platelet rich plasma (PRP). Eur J Pharm Biopharm 2020; 148: 67-76.

    22) Hoeferlin LA, Huynh QK, Mietla JA, S et al. The lipid portion of activated platelet-rich plasma significantly contributes to its wound healing properties. Adv Wound Care 2015; 4: 100-109.

    23) Saeednia S, Bahadoran H, Amidi F, et al. Nerve growth factor in human semen: Effect of nerve growth factor on the normozoospermic men during cryopreservation process. IJBMS 2015; 18(3): 292-299.

    24) Saeednia S, Shabani Nashtaei M, Bahadoran H, Aleyasin A, Amidi F. Effect of nerve growth factor on sperm quality in asthenozoosprmic men during cryopreservation. Reprod Biol Endocrinol 2016; 14: 29.

    25) Selvaraju S, Krishnan BB, Archana SS, Ravindra JP. IGF1 stabilizes sperm membrane proteins to reduce cryoinjury and maintain post-thaw sperm motility in buffalo (Bubalus bubalis) spermatozoa. Cryobiology 2016; 73(1): 55-62.

    26) Najafi A, Amidi F, Sedighi Gilani MA, et al. Effect of brain-derived neurotrophic factor on sperm function, oxidative stress and membrane integrity in human. Andrologia 2017; 49(2): e12601.

    27) Alkhawagah AR, Ricci A, Banchi P, et al. Effect of epidermal growth factor (EGF) on cryopreserved piedmontese bull semen characteristics. Animals (Basel) 2022; 12(22): 3179.

    28) Maia MS. Sperm viability and reactive oxygen species (ROS) generation in ram semen cryopreserved in extenders with sodium lauryl sulfate (OEP), Trolox-c and catalase. Thesis. Faculty of Veterinary Medicine and Animal Science, UNESP, Botucatu. 2006.

    29) Maia MS, Bicudo SD, Azevedo HC, et al. Motility and viability of ram sperm cryopreserved in a Tris-egg yolk extender supplemented with anti-oxidants. Small Rumin Res 2009; 85: 85-90.

    30) Forouzanfar M, Ershad SF, Hosseini SM, et al. Can permeable super oxide dismutase mimetic agents improve the quality of frozen–thawed ram semen. Cryobiology 2013; 66: 126-130.

    31) Güngör S, Ata A, İnanç ME. Effects of trehalose and catalase on the viability and kinetic parameters of cryopreserved ram sperm. Acta Sci Vet 2018; 46: 1577.

    32) Abedin SN, Baruah A, Baruah KK, et al. Zinc oxide and selenium nanoparticles can improve semen quality and heat shock protein expression in cryopreserved goat (Capra hircus) spermatozoa. J Trace Elem Med Biol 2023; 80: 127296.

    33) Moce E, Purdy PH, Graham JK. Treating ram sperm with cholesterol-loaded cyclodextrins improves cryosurvival. Anim Reprod Sci 2010; 118(2-4): 236-247.

    34) İnanç ME, Tekin K, Olgac KT, et al. Effect of cholesterol loaded cyclodextrin on semen cryopreservation of Aksaray Malakli shepherd dogs of different ages. Anim Reprod Sci 2018; 193: 191-200.

    35) Diaz R, Quinones J, Short S, et al. Effect of exogenous lipids on cryotolerance of Atlantic salmon (Salmo salar) spermatozoa. Cryobiology 2021; 98: 25-32.

    36) Molina A, Sanchez J, Sanchez W, Vielma V. Platelet-rich plasma as an adjuvant in the endometrial preparation of patients with refractory endometrium. JBRA Assist Reprod 2018; 22(1): 42-48.

    37) Zamaniyan M, Peyvandi S, Heidaryan Gorji H, et al. Effect of platelet-rich plasma on pregnancy outcomes in infertile women with recurrent implantation failure: A randomized controlled trial. Gynecol Endocrinol 2021; 37(2): 141-145.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • [ Başa Dön ] [ Özet ] [ PDF ] [ Benzer Makaleler ] [ Yazara E-Posta ] [ Editöre E-Posta ]
    [ Ana Sayfa | Editörler | Danışma Kurulu | Dergi Hakkında | İçindekiler | Arşiv | Yayın Arama | Yazarlara Bilgi | E-Posta ]